Antibiotikaresistente „Superbakterien“, die alle Versuche, sie abzutöten, zunichte machen können, stellen eine dringende Krise für die öffentliche Gesundheit dar, und nach Angaben der Centers for Disease Control treten jedes Jahr mehr als 2,8 Millionen antibiotikaresistente Infektionen auf. Forscher auf der ganzen Welt bemühen sich, diese Herausforderung zu meistern.
Ein gemeinsames Forscherteam unter der Leitung der University of Massachusetts Amherst, zu dem auch Wissenschaftler des biopharmazeutischen Unternehmens Microbiotix gehörten, gab kürzlich bekannt, dass es erfolgreich gelernt hat, wie man eine Schlüsselmaschinerie sabotiert, mit der Krankheitserreger ihre Wirtszellen infizieren, und einen Test dafür entwickelt hat Identifizierung der Medikamente der nächsten Generation, die auf diese empfindliche Zellmaschinerie abzielen und echte Fortschritte bei der öffentlichen Gesundheit erzielen.
Die typische Strategie bei der Behandlung mikrobieller Infektionen besteht darin, den Erreger mit einem Antibiotikum zu bekämpfen, das in die schädliche Zelle eindringt und diese abtötet. Das ist nicht so einfach, wie es klingt, denn jedes neue Antibiotikum muss sowohl wasserlöslich sein, damit es sich leicht durch den Blutkreislauf bewegen kann, als auch ölig sein, um die erste Verteidigungslinie der pathogenen Zelle, die Zellmembran, zu überwinden. Wasser und Öl vertragen sich natürlich nicht, und es ist schwierig, ein Medikament zu entwickeln, das beide Eigenschaften in ausreichendem Maße aufweist, um wirksam zu sein.
Die Schwierigkeit hört hier aber noch nicht auf, denn pathogene Zellen haben eine sogenannte „Effluxpumpe“ entwickelt, die Antibiotika erkennen und sie dann sicher aus der Zelle ausscheiden kann, wo sie keinen Schaden anrichten können. Wenn das Antibiotikum die Efflux-Pumpe nicht überwinden und die Zelle abtöten kann, „merkt“ sich der Krankheitserreger, wie das spezifische Antibiotikum aussieht, und entwickelt zusätzliche Efflux-Pumpen, um effizient damit umzugehen – und wird im Endeffekt resistent gegen dieses bestimmte Antibiotikum.
Ein Weg nach vorne besteht darin, ein neues Antibiotikum oder Kombinationen davon zu finden und zu versuchen, den Superkeimen immer einen Schritt voraus zu sein.
„Oder wir können unsere Strategie ändern“, sagt Alejandro Heuck, außerordentlicher Professor für Biochemie und Molekularbiologie an der UMass Amherst und leitender Autor des Papiers. „Ich bin Chemiker und habe mich schon immer sehr dafür interessiert, zu verstehen, wie chemische Moleküle mit lebenden Organismen interagieren. Insbesondere habe ich meine Forschung auf die Moleküle konzentriert, die die Kommunikation zwischen einem Krankheitserreger und der Wirtszelle ermöglichen, die er erreichen möchte.“ einfallen.“
Heuck und seine Kollegen waren besonders an einem Kommunikationssystem namens Typ-3-Sekretionssystem interessiert, das bisher eine evolutionäre Anpassung zu sein scheint, die nur für pathogene Mikroben gilt.
Wie die pathogene Zelle haben auch Wirtszellen dicke, schwer zu durchdringende Zellwände. Um sie zu durchbrechen, haben Krankheitserreger eine spritzenartige Maschine entwickelt, die zunächst zwei Proteine absondert, die als PopD und PopB bekannt sind. Weder PopD noch PopB können einzeln die Zellwand durchbrechen, aber die beiden Proteine zusammen können ein „Translokon“ bilden – das zelluläre Äquivalent eines Tunnels durch die Zellmembran. Sobald der Tunnel aufgebaut ist, kann die pathogene Zelle andere Proteine injizieren, die den Wirt infizieren.
Dieser gesamte Prozess wird als Typ-3-Sekretionssystem bezeichnet – und nichts davon funktioniert ohne PopB und PopD. „Wenn wir nicht versuchen, den Erreger abzutöten“, sagt Heuck, „dann hat er keine Chance, Resistenzen zu entwickeln. Wir sabotieren nur seine Maschine. Der Erreger lebt noch, er ist nur wirkungslos und der Wirt hat Zeit.“ seine natürlichen Abwehrkräfte zu nutzen, um den Krankheitserreger loszuwerden.
Die Frage ist also, wie man das Molekül findet, das den Aufbau des Translokons blockieren kann.
Manchmal finden Wissenschaftler Lösungen in jenen „Glühbirnenmomenten“, in denen plötzlich alles einen Sinn ergibt. In diesem Fall war es eher ein Blitzmoment.
Heuck und seine Kollegen erkannten, dass eine Enzymklasse namens Luciferasen – ähnlich denen, die Blitzwanzen nachts zum Leuchten bringen – als Tracer verwendet werden könnte. Sie spalten das Enzym in zwei Hälften. Eine Hälfte ging in die PopD/PopB-Proteine ein, die andere Hälfte wurde in eine Wirtszelle eingebaut.
Diese manipulierten Proteine und Wirte können mit verschiedenen chemischen Verbindungen überflutet werden. Wenn die Wirtszelle plötzlich aufleuchtet, bedeutet das, dass PopD/PopB die Zellwand erfolgreich durchbrochen hat und die beiden Hälften der Luciferase wieder vereint und zum Leuchten gebracht hat. Aber wenn die Zellen dunkel bleiben? „Dann wissen wir, welche Moleküle das Translokon brechen“, sagt Heuck.
Heuck weist schnell darauf hin, dass die Forschung seines Teams nicht nur offensichtliche Anwendungen in der Welt der Arzneimittel und der öffentlichen Gesundheit hat, sondern auch unser Verständnis darüber erweitert, wie genau Mikroben gesunde Zellen infizieren. „Wir wollten untersuchen, wie Krankheitserreger wirken“, sagt er, „und dann entdeckten wir plötzlich, dass unsere Erkenntnisse zur Lösung eines Problems der öffentlichen Gesundheit beitragen können.“
Diese Forschung wird in der Zeitschrift veröffentlicht ACS-Infektionskrankheiten.
Mehr Informationen:
Hanling Guo et al., Zellbasierter Assay zur Bestimmung der Typ-3-Sekretionssystem-Translokon-Assemblierung in Pseudomonas aeruginosa unter Verwendung von gespaltener Luciferase, ACS-Infektionskrankheiten (2023). DOI: 10.1021/acsinfecdis.3c00482