In seinem Vortrag „How to use CRISPR-Cas to Combat AMR“ am ESCMID Global CongressAssistenzprofessor Ibrahim Bitar, Abteilung für Mikrobiologie, Medizinische Fakultät und Universitätsklinikum in Pilsen, Karls-Universität in Prag, Pilsen, Tschechische Republik, wird einen Überblick über die Molekularbiologie der CRISPR-Technologie geben und erklären, wie sie zur Bekämpfung antimikrobieller Mittel eingesetzt werden kann Widerstand.
Clustered Regular Interspaced Short Palindromic Repeats (CRISPRs) und CRISPR-assoziierte Gene (Cas) sind im Genom vieler Bakterien weit verbreitet und stellen einen Abwehrmechanismus gegen fremde Eindringlinge wie Plasmide und Viren dar. Die CRISPR-Arrays bestehen aus einer wiederholten Anordnung kurzer Sequenzen, von denen jede aus einer Nukleinsäuresequenz stammt und genau mit dieser übereinstimmt, die einst in den Wirt eingedrungen ist.
Begleitend zu den CRISPR-Sequenzen gibt es 4–10 CRISPR-assoziierte Gene (cas), die hoch konserviert sind und die Cas-Proteine kodieren. Cas-Proteine führen in Prokaryoten (Bakterien) eine adaptive Immunität durch, die auf immunologischen Erinnerungen basiert, die im CRISPR-Array gespeichert sind.
Das CRISPR/Cas-System integriert ein kleines Stück fremder DNA von Eindringlingen wie Plasmiden und Viren in ihre direkten Wiederholungssequenzen und wird bei zukünftigen Invasionen dieselben externen DNA-Elemente erkennen und abbauen.
Da die CRISPR/Cas-Systeme DNA von eindringenden Krankheitserregern in chronischer Reihenfolge integrieren, kann die Genotypisierung verwendet werden, um die Klonalität und den Ursprung der Isolate zu verfolgen und sie als eine Population von Stämmen zu definieren, die denselben Umweltbedingungen ausgesetzt waren, einschließlich der geografischen Lage (Region). ) und Gemeinschafts-/Krankenhauseinrichtungen und schließlich weiter ausgeweitet, um pathogene Bakterien in der menschlichen Gesellschaft zu verfolgen.
CRISPR/Cas-Systeme können auch zur Entwicklung antimikrobieller Wirkstoffe eingesetzt werden: Durch die Einführung selbstzielender crRNAs werden Zielbakterienpopulationen effektiv und selektiv abgetötet. Aufgrund des Mangels an verfügbaren wirksamen antimikrobiellen Wirkstoffen zur Behandlung von multiresistenten (MDR) Infektionen begannen Forscher, nach alternativen Methoden zur Bekämpfung von MDR-Infektionen zu suchen, anstatt den Prozess der Entwicklung neuer antimikrobieller Wirkstoffe zu durchlaufen, der sich über Jahrzehnte hinziehen kann.
Infolgedessen wurde 2014 erstmals das Konzept der CRISPR/Cas-basierten selektiven antimikrobiellen Mittel entwickelt und demonstriert. Vektoren, die Cas9 kodieren, und Leit-RNAs, die auf genomische Loci eines bestimmten Bakterienstamms/einer bestimmten Bakterienart abzielen, können über Bakteriophagen oder konjugative Bakterien an den Zielstamm abgegeben werden Stämme.
Theoretisch eliminiert die Bereitstellung der manipulierten CRISPR/Cas-Systeme gezielt Zielstämme aus der Bakterienpopulation, doch so einfach ist das nicht.
Während diese Systeme ein Ziel für Manipulationen/Eingriffe sein können, werden alle Bakterien auf mehreren Wegen reguliert, um sicherzustellen, dass die Bakterien die Kontrolle über den Prozess behalten. Daher bestehen bei der Verwendung dieses Systems als antimikrobielles Mittel noch einige große Herausforderungen.
Die meisten Methoden erfordern die Bereitstellung des erneut sensibilisierten Systems durch Konjugation; Der Vektor wird von einem nicht virulenten Laborbakterienstamm getragen, der den Vektor/das Plasmid durch Konjugation teilen soll. Der Konjugationsprozess ist ein natürlicher Prozess, den die Bakterien durchführen und der dazu führt, dass Plasmide untereinander (auch mit anderen Arten) ausgetauscht werden.
Der Prozentsatz der konjugierten (erfolgreich abgegebenen) Bakterien an der gesamten Bakterienpopulation ist entscheidend für die Wirksamkeit der erneuten Sensibilisierung. Dieser Prozess wird durch mehrere komplizierte Wege gesteuert.
Bakterien verfügen außerdem über eingebaute Anti-CRISPR-Systeme, die alle durch CRISPR-Cas-Systeme verursachten Schäden reparieren können.
Abwehrsysteme, die das Bakterium nutzt, um sich vor fremder DNA zu schützen, befinden sich häufig innerhalb von Abwehrinseln (Genomsegmente, die Gene mit ähnlicher Funktion beim Schutz des Wirts vor Eindringlingen enthalten) im Bakteriengenom; Zum Beispiel: acr (ein Gen, das zusammen mit anderen ähnlichen Varianten als Repressor von Plasmid-Konjugationssystemen fungiert) kommt häufig mit Antagonisten anderer Wirtsabwehrfunktionen (z. B. Anti-Restriktions-Modifikationssystemen) zusammen, und Experten gehen davon aus, dass MGEs (mobile genetische Elemente). ) organisieren ihre Gegenverteidigungsstrategien in „Anti-Verteidigungs“-Inseln.
Assistenzprofessor Bitar kommt zu dem Schluss: „Zusammenfassend lässt sich sagen, dass diese Methode als alternative Möglichkeit zur Bekämpfung antimikrobieller Resistenzen sehr vielversprechend erscheint. Die Methode basiert auf dem Konzept der erneuten Sensibilisierung der Bakterien, um bereits verfügbare Antibiotika zu nutzen – mit anderen Worten, sie zu entfernen.“ Resistenzen entwickeln und sie wieder anfällig für Antibiotika der ersten Wahl machen.
„Dennoch sind die bakteriellen Wege immer kompliziert und solche Systeme werden immer stark durch mehrere Wege reguliert. Diese regulierten Wege müssen eingehend untersucht werden, um einen selektiven Druck zu vermeiden, der die Aktivierung von Anti-CRISPR-Systemen begünstigt und somit eine aggressivere Verbreitung von Resistenzen zur Folge hat.“ .“
Bereitgestellt von der European Society of Clinical Microbiology and Infectious Diseases